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Listing mensuel

4 février 2026
  • Career Outside Academia Seminar: Dr Jona Karam (clinical research associate chez THT bio-science)

    4 février 2026  11 h 00 min - 12 h 00 min
    Marcel Dorée Seminar Room, CRBM

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5 février 2026
  • Annual Symposium of the Infection & Immunity Axis, BIOLuM: Interferons in Health and disease

    5 février 2026  8 h 40 min - 19 h 30 min

    Organizers: NadineLaguette, Caroline Goujon, Isabelle Vila, Lise Chauveau & Eric Martinez

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9 février 2026
  • Thesis Defense: Valentin Gonay (CRBM)

    9 février 2026  14 h 00 min - 15 h 00 min
    Amphi Balard

    "Machine learning model and other computational approaches to predict the balance of protein aggregation, gelation and solubility"

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10 février 2026
  • Aurélie DIMAN, Université de Genève, Suisse

    10 février 2026  11 h 00 min - 12 h 30 min
    Institut de Génétique Moléculaire de Montpellier (IGMM), 1919 Rte de Mende, 34090 Montpellier, France

    IGMM External Seminar

    “Too knotty to resist: Twisted DNA behavior attracts Smc5/6”

    Aurélie a obtenu son master en biochimie, biologie moléculaire et cellulaire à l’UC Louvain (Louvain-la-Neuve, Belgique). En 2014, elle a entamé une thèse dedoctorat dans le laboratoire de la Professeure Anabelle Decottignies à l’Institut de Duve (Bruxelles, Belgique), où elle a étudié la régulation transcriptionnelle des télomères humains ainsi que le mécanisme ALTernatif de maintien de leur longueur dans les cellules cancéreuses. En 2018, elle a rejoint le laboratoire du Professeur Michel Strubin à l’Université de Genève (Suisse) en tant que chercheuse postdoctorale, afin d’explorer les bases moléculaires responsables de la liaison préférentielle du complexe Smc5/6 àl’ADN extrachromosomique dans les cellules de mammifères. Depuis 2025, elle occupe un poste de maître-assistante et développe un programme de recherche indépendant visant à élucider les mécanismes moléculaires parlesquels le complexe Smc5/6 réprime spécifiquement la transcription de l’ADN extrachromosomique.

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12 février 2026
13 février 2026
  • SaraH Sanders (The Stowers Institute for Medical Research, Kansas City, MO, USA)

    13 février 2026  11 h 00 min - 12 h 00 min
    Ph. Jeanteur Seminar Room, IGMM

    CRBM and BIOLUM external seminar

    wtf evolution

    Contact: dominique.helmlinger@crbm.cnrs.fr

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17 février 2026
  • Eitan-Erez ZAHAVI, Weizmann Institute of Sciences, Israël

    17 février 2026  11 h 00 min - 12 h 30 min
    Institut de Génétique Moléculaire de Montpellier (IGMM), 1919 Rte de Mende, 34090 Montpellier, France

    Title : "The hidden SINEs of recovery"
    Contact : jean-christophe.andrau@igmm.cnrs.fr 

    "The hidden SINEs of recovery"

    Repeat element RNAs integrate neuronal growth after injury

    Neuronal growth and regeneration are regulated by specific genetranscription and translation programs that integrate mRNA localization, localprotein synthesis, retrograde signaling and transcription factor (TF) activity.While the role of protein coding genes in these processes is well studied, thatof regulatory RNAs is little understood. In a screen to identify RNApolyadenylation changes in mouse dorsal root ganglia (DRG) sensory neuronsfollowing sciatic nerve injury, we found the upregulation of polyadenylatedB2-SINE repeat elements. Employing long-read paired-end RNA-seq and ATAC-seqanalyses we pinpointed the upregulation to a subset of B2-SINE loci thatundergo injury-induced chromatin accessible remodeling. This transcriptionalupregulation was specific to injured peripheral sensory neurons and did notoccur retinal ganglion cells following optic nerve crush. Importantly,expression of B2-SINE RNA in retinal and cortical neurons, whose intrinsicability to regenerate is poorer than that of DRG neurons, significantlyimproved their regrowth after nerve injury. Hence, we termed this subset ofinjury-induced, DRG specific elements GI-SINE (growth-inducing B2-SINE).GI-SINEs are induced as discrete transcriptional units from theinjury-activated and pro-regenerative ATF3 and other AP-1 TFs associated loci.GI-SINE RNA interacts with ribosomal proteins and nucleolin, anaxon-growth-regulating RNA binding protein, to regulate translation in neuronalcytoplasm. Finally, antisense oligos against GI-SINEs perturb sensory neuronoutgrowth and nucleolin-ribosome interactions. Thus, we identify a subfamily oftransposable element RNAs that is integral in a signaling circuit regulatingneuronal regrowth, suggesting similar elements can be utilized as regulatedregenerative effectors in other physiological contexts.

     

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19 février 2026
  • Bill EARNSHAW (Univ Edinburgh, Scotland, UK)

    19 février 2026  11 h 00 min - 12 h 00 min
    CRBM-CNRS, 1919 Rte de Mende, 34293 Montpellier, France

    Conférence invitée CRBM 
    Salle Marcel Dorée
    contact: Claude.prigent@crbm.cnrs.fr 
    https://earnshawlab.com/prof-bill-earnshaw/

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